Q:載量
A:膠粒平均直徑100微米,比表面積大,結合大腸桿菌重組His-tag融合蛋白的能力大于20mg/ml。
Q:最大柱壓
A:0.3Mpa;3Bar
Q:最大流速
A:3ml/min(1ml預裝柱)
15ml/min(5ml預裝柱)
Q:PH穩定性
A:4~13
Q:破菌緩沖液如何配置
A:
組份 |
配置1L需要量 |
終濃度 |
Tris-HCl(PH7.4) |
2.42g |
20mM |
NaCL |
14.6g |
250mM |
PMSF |
10ml
100X儲液 |
1mM |
Q:100* PMSF儲液如何配置
A:1.74g PMSF溶解于100ml異丙醇
Q:100* PMSF儲液如何保存
A:可-20°長(cháng)期保存,4°保存數月,禁止室溫存放。
Q:上樣緩沖液如何配置
A:同破菌緩沖液,可以不加PMSF
Q:洗雜緩沖液如何配置
A:在上樣緩沖液中添加咪唑至20mM
Q:洗脫緩沖液如何配置
A:在上樣緩沖液中添加咪唑至250mM
Q:關(guān)于緩沖液Tips
A:上述緩沖液為起始緩沖液,目的蛋白質(zhì)不同,可能需要不同的純化緩沖液(如PBS)。具體使用可以參考分子克隆等工具書(shū)或者文獻對緩沖液做修改。也可以根據蛋白質(zhì)性質(zhì)對上述緩沖液做修改,例如:目的蛋白質(zhì)在PH7.4下不穩定,可以在PH7.3-8.3的范圍內對緩沖液的PH調整;250mM咪唑未洗脫下目的蛋白質(zhì),可以繼續提高咪唑濃度;洗雜蛋白時(shí)候目的蛋白質(zhì)也洗脫,洗雜緩沖液中咪唑濃度降低或者不添加;一些情況下,緩沖液中添加5%-10%的甘油,0.1%的吐溫,0.5M的Nacl會(huì )提高蛋白質(zhì)純化的效果。
Q:破菌
A:以500ml菌體為例:離心收集500ml表達目標蛋白的大腸桿菌,凍融或超聲破菌于20ml破菌緩沖液。這一步可以適當加入PMSF作為蛋白酶抑制劑,但是不能使用EDTA。
Q:上樣前平衡純化柱
A:10倍柱體積上樣緩沖液平衡
Q:上樣
A:離心取上清,上樣于預先平衡好的純化柱(10倍柱體積上樣緩沖液平衡),通常自然流速可以很好結合。
Q:流速過(guò)慢,如何處理
A:少數情況下,流速過(guò)慢,可以使用硅膠管控制上樣速度。
Q:上樣后洗柱
A:樣品上完以后,使用上樣緩沖液洗柱10個(gè)柱體積
Q:如何洗雜
A:使用10-20倍柱體積洗雜緩沖液將雜蛋白從純化柱上洗去,如果雜蛋白太多可以加大洗雜體積。
Q:如何洗脫
A:洗雜結束以后,使用4-10倍柱體積洗脫緩沖液將目標蛋白洗脫。通常目標蛋白會(huì )在第二個(gè)柱體積中開(kāi)始流出。
Q:純化完成后如何處理并保存柱子
A:收集完成以后,使用8M尿素或者6M鹽酸胍5倍柱體積洗柱,再使用大量蒸餾水水洗柱,封閉純化管上下兩端保存在4°C,不要再-20°凍結。如果長(cháng)期不用,加入20%乙醇保存。
Q:哪些情況需要再生
A:鎳親和凝膠可以多次使用,不需要再生。如果需要使用一根柱子純化不同目標蛋白,或者長(cháng)時(shí)間使用金屬離子脫落,雜蛋白沉淀堵塞柱子、流速慢,可以進(jìn)行再生處理
Q:如何再生
A:·用0.1M EDTA洗柱4倍柱體積,將金屬離子洗脫下來(lái),再用蒸餾水洗柱10倍柱體積除去EDTA殘留。如果柱子堵塞嚴重,使用1% Triton X-100/PBS浸泡過(guò)夜。
·使用0.1M鹽酸洗柱4倍柱體積,10倍柱體積蒸餾水沖洗,再用0.1M氫氧化鈉洗柱4倍柱體積,PBS/TBS平衡PH,大量蒸餾水洗柱。這一步需要避免強酸、強堿洗柱時(shí)間過(guò)長(cháng)。
·用4%氯化鎳或者硫酸鎳3倍柱體積重新螯合10分鐘,也可以使用4%氯化鈷或者硫酸鈷螯合柱子。
·柱子長(cháng)時(shí)間不用,加入20%乙醇,封口后與4°保存,避免干裂或者凍結
Q:不確定蛋白穩定性的情況下,如何防止降解
A:在未知融合蛋白穩定性的情況下,整個(gè)純化過(guò)程最好在4°完成,可以使用蛋白酶抑制劑防止降解,但是EDTA應當在純化完成以后再加入。此外,可以使用非離子去垢劑改善結合,具體使用濃度參考以下:1% Triton X-100或Tween-20或0.03% SDS或0.1%NP-40
Q:還可以通過(guò)哪些方式減少雜蛋白的結合
A:上樣緩沖液中可以含有1mM咪唑減少雜蛋白的結合
Q:洗雜時(shí)目的蛋白脫落
A:部分目標蛋白會(huì )在20mM咪唑洗雜緩沖液中流出,所以對于新樣品,每一步都要留樣電泳,摸索純化條件
Q:蛋白為包涵體,如何實(shí)驗
A:如果融合蛋白是包涵體形式,那么可以選擇變性純化方法,通常是在緩沖液中加入8M尿素以及去垢劑。變性春花時(shí)一定要做好樣品處理,不然容易造成柱子堵塞。變性方法得到的蛋白一般沒(méi)有活力,可以用來(lái)制備抗體,但如想測定活力,就需要做復性。
Q:除了咪唑洗脫,還有其他方法嗎
A:除了常規的咪唑洗脫方法以外,還有EDTA洗脫和PH梯度洗脫。后兩種方法缺點(diǎn)明顯,只在特殊情況下使用。
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